К инвазивным относят методы исследования, связанные с введением в полости органов (сосуды, брогхи, пищеварительный канал, брюшная полость и др.) различных инструментов (эндоскопов, рентгеноконтрастных катетеров и др.), через которые возможно проведение различных диагностических процедур ( =эндоскопические ). Нередко инвазивные методы сами по себе представляют оперативное вмешательство и производятся в специально оборудованной рентгенооперационной, с соблюдением всех правил асептики.
инструментальный метод визуализации состояния органов (например, грудной полости) с помощью специальных оптических приборов.
Эндоскопические исследования: бронхов (бронхоскопия), легких (трансбронхиальная биопсия легкого, торакоскопия), плевры (плевроскопия), средостения (медиастиноскопия).
Проводится для оценки состояния слизистой оболочки бронхов и дифференциального диагноза. В ряде случаев только так могут быть выявлены заболевания, являющиеся причиной хронической бронхиальной обструкции.
Впервые бронхоскопия проведена в 1897 г. в Германии ларингологом Густавом Киллианом жестким (прямым) бронхоскопом, аналог которого широко применялся до 70-х годов XX века. В настоящее время используются, как правило, гибкие бронхоскопы с волоконной оптикой. Жесткие прямые бронхоскопы применяются довольно редко – для удаления инородных тел или остановки кровотечений.
осмотр слизистой оболочки бронхов; культуральное исследование бронхиального содержимого; Бронхоальвеолярный лаваж (БАЛ) с определением клеточного состава; биопсию стенки бронхов.
Бронхоскопия - единственный на сегодняшний день вид современного лечебно-диагностического исследования, позволяющий изнутри осмотреть трахеобронхиальное дерево и произвести визуальную оценку его состояния. Часто бронхоскопия используется для подтверждения спорных диагнозов при заболеваниях дыхательной системы, Однако осмотр далеко не исчерпывает возможности бронхоскопии. Бронхоскопия позволяет забрать мокроту непосредственно из бронхов для посева на микрофлору и чувствительность к антибиотикам. Бронхоскопия позволяет провести биопсию патологического участка бронхов, что незаменимо для ранней диагностики рака. При бронхоскопии врач имеет возможность ввести лекарственное вещество прицельно в патологический очаг легких.
Диагностика острых воспалительных процессов в легких при отсутствии указаний на наличие подобных заболеваний в прошлом, при наличии соответствующих жалоб; Диагностика хронических воспалительных заболеваний органов дыхания в период их обострения, так же при наличии соответствующих жалоб; Длительно (свыше 3 недель) существующий кашель, плохо поддающийся лечению; Изменение характера кашля; Затрудненное дыхание Кровохарканье; Изменения, выявленные при рентгенологических обследованиях, требующие детального дополнительного уточнения.
метод, помогающий уточнить характер воспаления бронхиальной стенки и дать обоснованный ответ на вопрос о возможной связи заболевания органов дыхания с профессией. БАЛ атравматичен, хорошо переносится, опасных для жизни осложнений при его проведении не отмечено.
Инстилляция стерильного физиологического раствора небольшими порциями в субсегментарные бронхи через оптоволокно бронхоскопа с целью анализа клеток и растворенных веществ из нижних дыхательных путей Промывную жидкость вводят в выбранный сегментарный бронх с последующей ее вакуум-аспирацией. Технически удобнее вливать жидкость в III сегмент (при положении больного лежа) и IV, V и IX сегменты (при положении сидя). Объем промывной жидкости, как правило, составляет 100-200 мл. После введения каждой порции (50 мл) раствора смыв с помощью электроотсоса через биопсийный канал фибробронхоскопа аспирируется в стерильную градуированную емкость.
Для проведения цитологического исследования 10 мл БАЛЖ сразу после получения фильтруют через 4 слоя стерильной марли или мелкую сетку в центрифужную пробирку. 10 капель профильтрованного смыва смешивают на часовом стекле с 1 каплей жидкости Самсона и заполняют счетную камеру. Подсчитывая клеточные элементы по всей камере, устанавливают их число в 1 мл смыва. Клеточный состав на основании подсчета не менее 500 клеток с использованием иммерсионного объектива. Учитывают альвеолярные макрофаги, лимфоциты, нейтрофилы, эозинофилы, базофилы. Клетки бронхиального эпителия в связи с их незначительным количеством в смывах не подсчитывают.
Исследование жидкости БАЛ представляет собой стандартизированную процедуру. Ее воспроизводимость была показана как в сравнении данных последовательных БАЛ, полученных при повторении процедуры до 5 раз с интервалом в 6 недель у одних и тех же лиц, так и при сравнении результатов, полученных в различных центрах. Данное исследование показало высокие (> 0,8) коэффициенты корреляции для всех типов клеток. NB! Повторные или последовательные БАЛ вызывают воспаление дыхательных путей сами по себе и характеризуются увеличением доли воспалительных клеток в БАЛ (в основном нейтрофилов) в течение 72 часов.
Жидкость, получения после вливания первой порции БАЛ, ряд авторов считают «бронхиальной порцией», предполагая таким образом, что она может дать представление о воспалении дыхательных путей лучше, чем последующие порции, которые должны лучше отражать состояние дистальных дыхательных путей. Однако это предположение так и не было утверждено в общепринятой стандартизованной методике исследования.
На протяжении многих лет БАЛ использовался для исследования параметров воспаления дистальных дыхательных путей, особенно при интерстициальных заболеваний легких (ИЗЛ), а также при инфекциях, опухолях, воздействии токсичных веществ, бронхиальной астме и ХОБЛ. Помимо использования его при инфекциях (например, вентилятор-ассоциированной пневмонии) или в диагностике периферического рака, БАЛ приобрел признанное клиническое значение для исследования биомаркеров воспаления, необходимых для диагностики ИЗЛ. Кроме того, метод может использоваться как основной при небольшом количестве редких болезней, например, при гистиоцитозе Х (увеличение в БАЛ доли клеток CD 1 +).
Первое исследование, в котором подробно были рассмотрены характеристики жидкости БАЛ в норме, было проведено в 1974 г. К настоящему времени проведено 9 исследований, целью которых являлось получение данных о референтных значениях клеточного состава БАЛ у здоровых лиц.
Ссылки Статус курения, возраст Клетки БАЛ (%, M ± m) МФ ЛЦ НФ ЭФ G.A.Warr et al [22] Некурящие 78.8±3.8 16.7±3.0 4.6±0.4 Курильщики 87.0±1.8 6.5±1.1 6.6±0.6 M. Laviolette [ 44 ] Некурящие и экскурильщики 88.6±7.9 9.6±7.7 1.7±1.2 данные отс. D.B. Ettensohn et al. [ 16 ] Некурящие, в т.ч.: 95.1±2.9 3.9±2.4 0.7±0.8 0.17±0.9 Мужчины 94.9±3.2 4.2±2.7 0.8±0.8 0.2±1 Женщины 95.5±2.4 3.7±1.9 0.7 ±0.8 0.1±0.5 Авторы не названы [ 14 ] Некурящие 85±1 11±1 1.6±0.07 0.2±0.06 Экскурильщики 86±1 11±1 2.1±0.5 0.5±0.2 Курильщики 92±1 5±0.9 1.6±0.2 0.6±0.1 R. K. Merchant et al. [ 13 ] Некурящие 93.2±5.8 6.1±5.6 0.5±0.8 0.1±0.4 Курильщики 98.6±2.6 2.16±2.5 0.8±0.9 0.2±0.5 R.B. Everson et al. [ 37 ] Некурящие и курильщики 88.3±0.6 9.0±0.5 0.9±0.1 0.15±0.02 K.C. Meyer et al. [ 38 ] Некурящие возр. группа 1 85.8±2.0 12.4±1.7 1.84±0.26 0.11±0.08 Некурящие возр. группа 2 87.5±1.6 10.3±1.8 2.13±0.63 0.07±0.07 Некурящие возр. группа 3 81.5±2.7 13.2±2.6 4.61±1.23 0.71±0.38 K.C. Meyer et al. [ 48 ] Некурящие возр. группа 1 90±1 8.3±0.9 1.2±0.2 0.3±0.1 Некурящие возр. группа 2 80±3 17.0±3.3 2.7±0.7 0.3±0.1 A. Ekberg-Ja nss on [ 61 ] Некурящие (М± SD ) 87 (75–96) 10 (0–23) 2 (1–5) 0.8 (0–3) Курильщики (М ± SD ) 93 (39–99) 1 (0–5) 2 (0–11) 0.4 (0–2)
Принято считать, что в бронхоальвеолярном смыве у здоровых некурящих лиц в среднем содержится: А львеолярных макрофагов - 85-98%, Лимфоцитов 7-12%, Нейтрофилов- 1-2%, Эозинофилов и базофилови - менее 1 %, Общий цитоз от 0,2×10 6 до 15,6×10 6 в 1 мл. У курящих значительно выше цитоз и содержание лейкоцитов, альвеолярные макрофаги находятся в активированном ( фагоцитирующем ) состоянии.
Изменения эндопульмональной цитограммы имеют определенную направленность в зависимости от этиологии и активности заболевания легких. У больных хроническим бронхитом в бронхоальвеолярном смыве увеличено количество нейтрофилов, снижено содержание альвеолярных макрофагов, уровень лимфоцитов и эозинофилов сохраняется в пределах нормы. В фазе обострения ХБ и ХОБЛ в бронхоальвеолярном смыве повышается содержание нейтрофилов в среднем до 42%, а в фазе начинающейся ремиссии количество нейтрофилов снижается. У больных с обострением бактериальной этиологии резко возрастает количество нейтрофилов (до 76%), уменьшается уровень альвеолярных макрофагов (до 16,8%).
При биохимическом исследовании жидкости БАЛ у больных ХБ средние показатели активности протеаз ( эластазы, коллагеназы ) превышают норму. Активность ингибиторов протеолиза ( 1-антитрипсин) при этом резко снижается или отсутствует. Высокая активность эластазы сопутствует развитию дистрофических процессов в легких (эмфиземы и пневмосклероза). Исследование эластазы позволяет выявить начальные стадии развития этих процессов и своевременно провести лечение. У больных ХБ обнаруживают снижение содержания фосфолипидов, составляющих основу поверхностно-активного слоя альвеолярной выстилки.
метод, при котором производится искусственная индукция мокроты у пациента путем ингаляции гипертонического раствора натрия хлорида с целью анализа клеток и веществ, содержащихся в дыхательных путях.
Международные руководства дают указания относительно наиболее подходящих методов индукции и анализа клеток и растворимых медиаторов. Метод ИМ является воспроизводимым, однако способы обработки могут повлиять на результаты. В Международных руководствах по исследованию ИМ заявляется, что валидность исследований неклеточных компонентов ИМ как клинического метода остается неопределенной. Главным здесь является вопрос о неопределенности фактора разведения в супернатанте индуцированной мокроты.
